In vivo исследование лазерно-аблированных золотых наночастиц как дозоповышающих агентов для бинарной лучевой терапии злокачественных новообразований

Золотые наночастицы (ЗНЧ) активно используют в качестве дозоповышающего агента для совместного применения с рентгеновским облучением. Синтез золотых наночастиц методом лазерной абляции имеет ряд преимуществ перед остальными методами, например, возможность создания химически чистого раствора и относительно малая стоимость производства при масштабировании синтеза. В данной работе проведено исследование дополнительного противоопухолевого эффекта от совместного применения золотых наночастиц, синтезированных методом лазерной абляции, при комбинированном действии с рентгеновским излучением. В исследовании использованы мыши с перевитой подкожно сингенной аденокарциномой Ca755. Облучение проводилось в дозе 10 Гр через 30 мин после введения ЗНЧ. В результате в опытной группе животных установлено 66% полных регрессий в течение 210 сут с момента перевивки, в то время как в контрольной облученной группе регрессии опухолевых узлов отсутствовали. Проведена оценка поглощенной дозы на стенки сосудов опухоли в присутствии золотых наночастиц в кровотоке: вследствие локального энерговыделения доза достигала 26.8 Гр.

1. Gao Q., Zhang J., Gao J., et al. // Front. Bioeng. Biotechnol. 2021. V. 9. P. 1.

2. Medici S., Peana M., Coradduzza D., et al. // Seminars in Cancer Biology. 2021. New York: Academic. V. 76. P. 27.

3. Kulakov V.N., Lipengolts A.A., Grigorieva E.Yu., et al. // Zh Oncol.: Diag. Radiol. Radiother. 2018. V. 1 (4). P. 82 (in Russian).

4. Kulakov V.N., Lipengol’ts A.A., Grigor’eva E.Y., et al. // Pharmaceut. Chem. J. 2016. V. 50 (6). P. 388.

5. Sani A., Cao C., Cui D. // Biochem. Biophys. Rep. 2021. V. 26. P. 100991.

6. Goddard Z.R., Marín M.J., Russell D.A., et al. // Chem. Soc. Rev. 2020. V. 49 (23). P. 8774.

7. Hainfeld J.F., Smilowitz H.M., O’Connor M.J., et al. // Nanomedicine. 2013. V. 8 (10). P. 1601.

8. Chen Y., Yang J., Fu S., et al. // Int. J. Nanomed. 2020. V. 15. P. 9407.

9. Jendrzej S., Gökce B., Epple M., et al. // Chem. Phys. Chem. 2017. V. 18 (9). P. 1012.

10. Popov A.A., Zelepukin I.V., Tikhonowski G.V., et al. // J. Phys.: Conf. Ser. 2021. V. 2058 (1). P. 012004.

11. Skribitsky V.A., Pozdniakova N.V., Lipengolts A.A., et al. // Biophysics. 2022. V. 67 (1). P. 22.

12. Rosa S., Connolly C., Schettino G., et al. // Cancer Nanotechnol. 2017. V. 8 (1). P. 1.

13. Cui L., Her S., Borst G.R., et al. // Radiother. Oncol. 2017. V. 124 (3). P. 344.

14. Hainfeld J.F., O’Connor M.J., Dilmanian F.A., et al. // Brit. J. Radiol. 2011. V. 84 (1002). P. 526.

15. Roeske J.C., Nunez L., Hoggarth M., et al. // Technol. Cancer Res. Treatm. 2007. V. 6 (5). P. 395.

16. Lipengolts A.A., Vorobyeva E.S., Finogenova Yu.A., et al. // Med. Phys. 2019. V. 84 (4). P. 16 (in Russian).

17. Schamberg J.A. Y.F. // Arch. Dermatol. Syphilol. 1928. V. 18 (6). P. 862.

18. Fleming C.J., Salisbury E.L., Kirwan P., et al. // J. Am. Acad. Dermatol. 1996. V. 34 (2). P. 349.